Laborausrüstung

Eine zentrale Einrichtung des Lehrstuhls und der Versuchsanstalt ist das angegliederte Labor, welches in das analytische Labor und das mikrobiologische Labor unterteilt ist.

Das analytische Labor ist mit modernsten Analysegeräten ausgestattet, die es erlauben, sämtliche genormte trink- und abwasserrelevante Parameter zu analysieren. Neben der Charakterisierung von Wasserproben über Summenparameter wie CSB und BSB können organische Verbindungen mittels 3-D Fluoreszenz und UV-Spektroskopie genauer untersucht und über den TOC auch quantitativ erfasst werden. Wasserrelevante Anionen, Oxohalogenide, wie z.B. Bromat und Chlorat und auch kurzkettige organische Säuren können mittels Ionenchromatographie analysiert werden. Für die Analytik von Metallen steht die Atomabsorptionsspektroskopie mit Flammen- und Graphitofen-AAS sowie ein hochsensitives ICP-OES-Gerät zur Verfügung.

Die Charakterisierung und Identifizierung von organischen Molekülen aus wässrigen Proben in der Spurenstoffanalytik (Target Screening) kann mit Hilfe von chromatographischen Trenntechniken gekoppelt mit hochsensitiven massenspektrometrischen Detektionsverfahren (LC-MS/MS) durchgeführt werden. Hier können u.a. anderem auch Perfluorierte Alkyl-substanzen (PFAS) zuverlässig im Wasserkreislauf erfasst werden. Flüchtigen organische Substanzen wie Weichmacher oder flüchtige organische Säuren können mittels Headspace-GC/FID analysiert werden, die Untersuchung von Mikroplastik-Partikeln erfolgt mittels Thermo-Desorptions-Pyrolyse-GC/MS.

Das mikrobiologische Labor verfügt über konventionelle Kultivierungstechniken zur Bestimmung der für die hygienische Wasserqualität relevanten fäkalen Indikatorkeime (E. coli und Enterokokken) und pathogenen Bakterien (z.B. Pseudomonas aerugiosa und Legionella spp.). Weiterhin ist eine Fluoreszenzmikroskopie zum quantitativen Nachweis von aktiven und toten Mikroorganismen möglich. Bakterielle Zellzahlen, Antibiotikaresistenzgene und bestimmte Bakteriengruppen wie z.B. Enterokokken werden mit der quantitativen real-time Polymerasekettenreaktion (qPCR) erfasst. Zur Charakterisierung von mikrobiellen Gemeinschaften und Mikrobiomen aus aquatischen Systemen kommen Hochdurchsatzsequenzierungstechnologien auf der Basis von RNA oder DNA zum Einsatz. Weiterhin verfügt der Lehrstuhl über eine Stammsammlung an Mikroorganismen (Bakterien & Pilze) aus technischen Systemen, die für weiterführende Experimente verwendet werden können.

 

I) ALLGEMEINE WASSERPARAMETER

II) ORGANISCHE WASSERINHALTSSTOFFE

III) ELEMENTANALYTIK

IV) IONENCHROMATOGRAPHIE

V) PHOTOMETER

VI) HPLC-MS/MS-SETUP

VII) WEITERE HPLC/MS-AUSSTATTUNG

VIII) GASCHROMATOGRAPHIE

Leiterung

Dr. rer. nat. Carolin Heim Felix Ludwig

 

I) Untersuchungs- und Probenvorbereitung

II) Klassische Kultivierungstechniken

A) Hybridisierung

B) DNA Aufbereitung und Nachweis

C) Polymerase-Kettenreaktion (PCR)

D) Mikroskopie

Leiter

Dr. Christian Wurzbacher